在涉及蛋白组学的实验中，经常需要检测溶液中的蛋白质浓度。常用的蛋白定量的方法分为两大类：一类是铜还原法，原理是在碱性环境中利用肽键将二价铜还原为一价铜，间接反映蛋白质的数量，如双缩脲反应、改良Lowry法、BCA法等；另一类是染料结合法，原理是通过染料与蛋白质的结合，使溶液的光吸收峰发生改变，从而反应蛋白质的数量，*常用的染料是考马斯亮蓝G250（Bradford法），以及一些金属-染料复合物，如儿茶酚-钼酸复合物、邻苯三酚红-钼酸复合物等。
在蛋白质提取和蛋白电泳实验中，经常会用到还原剂和去垢剂（表面活性剂），上述蛋白定量方法往往与这些还原剂和去垢剂不兼容：还原剂对铜还原法有强烈干扰作用，即使在没有蛋白的情况下也能产生显色反应，无论是样品本身含有的抗坏血酸，或是缓冲液中含有的巯基乙醇、二硫苏糖醇（DTT）等，均能形成干扰；去垢剂则对染料结合法有强烈干扰作用，如SDS、Triton X100、Tween-20等，会与染料结合使溶液光吸收峰发生改变；高浓度的去垢剂也会对铜还原法产生干扰，但是在常用浓度下一般没有影响。这些还原剂和去垢剂在蛋白提取缓冲液和电泳相关缓冲液中很常见，传统上解决这些干扰的方法是通过蛋白沉淀法去除干扰成分，然后重悬蛋白进行浓度测定，其缺点在于显著增大了工作量，并且增加了实验误差。
Bradford法不受绝大部分样品中的化学物质的影响，也不受还原剂的影响，但是去垢剂可以造成强烈干扰。通过与染料结合，去垢剂抬高背景光吸收值，使得检测灵敏度和检测范围发生改变，甚至无法检测。本产品通过对Bradford法的改进，采用特殊配方，消除去垢剂的干扰，可兼容6% SDS、4% Tween20、2% Triton-X100、2% NP40，可耐受各种RIPA裂解液，对蛋白组学实验常用的各种缓冲液均可兼容。 |
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